为更好地服务客户，上海泽泉科技股份有限公司特邀德国WALZ资深光合荧光技术专家Gert Schansker博士，2019年11月将分别在上海、泰安、北京、沈阳等地举办系列巡回学术报告。
泽泉科技诚挚您参加本次活动，交流光合荧光研究领域内的最新技术，期待您的光临。
报告主题：叶绿素a荧光，PC、P700与Fd氧还状态同步测量技术在植物抗逆，PSI与PSII间的互作，流经与环绕PSI的电子传递等研究中的应用（Application of simultaneous measurements of Chl a fluorescence and the redox states of PC, P700 and Fd to the study of the interaction between PS II and PS I, the electron flow through and around PS I as well as the screening for stress tolerance）
报告人：
Gert Schansker博士
报告时间与地点：
? 中科院上海植物生理生态研究所
2019年11月4日（周一） 下午13:30
地址：上海市徐汇区枫林路300号中科院上海植生所1号楼113报告厅
? 山东农业大学
2019年11月6日（周三） 上午9:00
地址：山东省泰安市岱宗大街61号山东农业大学国重楼534报告厅
? 中科院北京植物研究所
2019年11月7日（周四） 下午15:10 – 16:40
地址：北京市香山南辛村20号中科院北京植物研究所景天楼303报告厅
? 沈阳农业大学
2019年11月11日（周一） 上午9：00
地址：沈阳市东陵路120号沈阳农业大学园艺学院326报告厅
报告摘要
作为PSI的电子供体和电子受体，PC（质体蓝素）和Fd（铁氧还蛋白）对PSI的氧化还原起着至关重要的调控作用。但一直缺乏科学便捷的手段对其运转状态进行检测。集成以DUAL-PAM-100为标志的第二代PAM的基本功能，采用先进的解卷积技术（一种根据来源不同对信号进行分离的技术），WALZ公司推出了可以测量PC和Fd氧化还原状态的新一代PAM荧光仪—DUAL-KLAS-NIR四通道动态LED阵列近红外光谱仪。新设备能够测量4组不同波段（780-820nm，820-870nm，840-965nm，870-965nm）的信号，实现对P700（PSI反应中心）、PC和Fd的氧化还原状态分别测量。另外，它还可以测量由540nm和460nm光化光激发的叶绿素荧光，了解叶片深层荧光信息。
利用DUAL-KLAS-NIR四通道动态LED阵列近红外光谱仪，可以准同步地测量各种不同的信号，不仅在驰豫动力下，还可持续地在自然稳态下同时获取各组分的信息。可获取Fd和PC库相对于P700的大小及不同条件下各组分氧化还原的比例，了解依赖类囊体腔内质子释放和ATP合酶的消耗之间平衡的光合控制过程等，在植物抗逆生理，光合突变体鉴定、PSI与PSII间的互作，流经与环绕PSI的电子传递等光合机理与生理生态研究中均有广泛的应用。
参会联系方式
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专家简介
Gert Schansker博士毕业于荷兰瓦赫宁根大学，获得植物生理学和生物物理学博士学位。主要研究方向为光合机构的光胁迫反应，提出光系统II受体侧碳酸氢盐的不可逆损失是光系统II活性降低的主要发生机制。他在研究中应用的主要非侵入性技术之一是叶绿素a荧光与光声信号的同步测量技术。之后在欧盟的资助下，前往希腊雅典Demokritos研究所从事博士后研究，使用EPR技术研究一氧化氮（NO）与光系统II锰簇S态的相互作用。他利用一系列单周转饱和闪光及叶绿素荧光Fo信号与S态相关的周期-4振幅研究了S态与S态衰变对NO的响应，阐明了实验中观测到的NO诱导的多线态EPR信号可能就是S-2态的表征。后来在瑞士日内瓦Reto Strasser博士的实验室工作期间，研究了光暗转换过程中820 nm吸收信号与叶绿素a荧光动力学之间的关系，系统研究了多种植物在各种胁迫条件下的快速叶绿素荧光诱导动力学曲线（O-I1-I2-P或O-J-I-P瞬变），为此类测量提供了几乎完整的描述。在匈牙利结束了光适应和一种虾青素过量导致烟草突变的研究之后，自2018年开始，Gert Schansker博士作为德国WALZ公司的应用科学家，负责Multi-Color-PAM和Dual-KLAS-NIR相关理论和应用的研究工作。
报告人近年发表的文章
1. Schansker G, Tóth S Z, Holzwarth A R, et al. Chlorophyll a fluorescence: beyond the limits of the Q A model[J]. Photosynthesis research, 2014, 120(1-2): 43-58.
2. Schansker G, Tóth S Z, Kovács L, et al. Evidence for a fluorescence yield change driven by a light-induced conformational change within photosystem II during the fast chlorophyll a fluorescence rise[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics, 2011, 1807(9): 1032-1043.
3. Schansker G, Yuan Y, Strasser R J. Chl a fluorescence and 820 nm transmission changes occurring during a dark-to-light transition in pine needles and pea leaves: a comparison[M]//Photosynthesis. Energy from the Sun. Springer, Dordrecht, 2008: 945-949.
4. Schansker G, Tóth S Z, Strasser R J. Dark recovery of the Chl a fluorescence transient (OJIP) after light adaptation: the qT-component of non-photochemical quenching is related to an activated photosystem I acceptor side[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics, 2006, 1757(7): 787-797.
5. Schansker G, Tóth S Z, Strasser R J. Methylviologen and dibromothymoquinone treatments of pea leaves reveal the role of photosystem I in the Chl a fluorescence rise OJIP[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics, 2005, 1706(3): 250-261.
6. Schansker G, Strasser R J. Quantification of non-Q B-reducing centers in leaves using a far-red pre-illumination[J]. Photosynthesis research, 2005, 84(1-3): 145-151.
7. Schansker G, Srivastava A, Strasser R J. Characterization of the 820-nm transmission signal paralleling the chlorophyll a fluorescence rise (OJIP) in pea leaves[J]. Functional Plant Biology, 2003, 30(7): 785-796.
8. Schansker G, Goussias C, Petrouleas V, et al. Reduction of the Mn cluster of the water-oxidizing enzyme by nitric oxide: formation of an S-2 state[J]. Biochemistry, 2002, 41(9): 3057-3064.
9. Schansker G, Van Rensen J J S. Performance of active photosystem II centers in photoinhibited pea leaves[J]. Photosynthesis Research, 1999, 62(2): 175-184.